Дельцид – Препарат Для Борьбы С Эктопаразитами Животных

Сергей Владимирович Енгашев, д.в.н., профессор,

генеральный директор ООО «Научно-внедренческий центр Агроветзащита»

Сергей Вячеславович Русаков, к.б.н., научный сотрудник ФГУ „ВГНКИ”

Frantsuz2005@yandex.ru

Антон Николаевич Токарев, к.в.н., преподаватель кафедры паразитологии ФГОУ ВПО Санкт-Петербургская государственная

академия ветеринарной медицины

Tokarev.an@yahoo.com

Изучение фармакокинетики и остаточных количеств дельцида в крови, молоке, органах и тканях животных после обработки 0,005% эмульсией дельцида показало наличие препарата в крови и молоке в течение часа после обработки, а в органах и тканях в течение первых пяти дней. Ключевые слова: дельцид, крупный рогатый скот, фармакокинетика, остатки, кровь, молоко, органы и ткани животных.

Delcid – preparation for combating animal ectoparasites
Engashev S.V., Rusakov S.V., Tokarev A.N.

Study of pharmacokinetics and residues deltsida in blood, milk, organs and tissues of animals after treatment with 0,005% emulsion deltsida showed the presence of the drug in blood and milk for one hour after treatment, and in organs and tissues during the first five days. Key words: delcid, cattle, pharmacokinetics, residues, blood, milk, organs and tissues of animals.

Широкое распространение на территории России имеют эктопаразиты, в том числе арахноэнтомозы, вызываемые саркоптоидными клещами и другими эктопаразитами, из-за которых наблюдается значительное снижение продуктивности сельскохозяйственных животных (5, 9, 10, 11, 12).

Кровососущие двукрылые насекомые (слепни, комары, мошки, мокрецы) наиболее массово распространены в лесотундровой, лесной и лесостепной зонах России. Из-за гнуса в наибольшей степени страдает крупный рогатый скот. Имеются многочисленные сообщения в том, что из-за гнуса удои у коров снижаются на 15-30%, а прирост массы животных на 25-40% (1, 4, 6, 7).

По данным К.П. Андреева (2) ущерб, наносимый скотовдству паразитическими членистоногими значительно превышает потери, наблюдаемые от инфекционныз болезней.

Для предотвращения указанных потерь возникает необходимость в проведении специальных защитных и лечебно-профилактических мероприятий, из которых наиболее целесообразными, рентабельными и экологически безопасными считаются обработки животных инсектоакарицидами контактного действия (3, 8, 9).

Фирмой ООО „Научно-внедренческий центр Агроветзащита” разработан новый препарат для борьбы с эктопаразитами животных, дезинсекции и дезакаризации животноводческих помещений – дельцид (в качестве действующего вещества содержит синтетический пиретроид дельтаметрин – 4%).

Материалы и методы. Для исследования фармакокинетики дельцида в крови, молоке и органах животных провели исследования на телятах, обработанных дельцидом.

Из 5 сформированных групп телят (по 3 головы) 1 группа являлась контролем, 2, 3, 4 и 5 группы подвергли обработке методом крупнокапельного опрыскивания, предварительно приготовленным рабочим раствором (125 мл 4% эмульсии дельцида на 100 л воды). Расход рабочего раствора на 1 животное составил 1 л. Через 1, 3, 6, 10 и 24 часа после обработки животных всех групп отбирали пробы крови и молока объемом не менее 50 мл для последующего анализа остатков пиретроида. Убой животных проводили через 1, 5, 10 и 15 суток после обработки. Для определения остаточных количеств препарата отобрали пробы мышц, жира, печени, почек, селезенки и легких.

Количественное определение остаточных количеств дельтаметрина в органах и тканях животных проводили при помощи метода газожидкостной хроматографии. Количественное определение содержания препарата в образцах проводили на газовом хроматографе CHROM 5 с пламенно-ионизационным детектором. Подготовку проб для анализа методом газожидкостной хроматографии проводили в соответствии с «Временными методическими указаниями по определению пиретроидов в крови, молоке и мясе животных методом газожидкостной хроматографии» (№ 6093-91, утверждены Минздравом СССР от 29.07.1991).

Экстракцию препарата из кожи, мышц, жировой ткани, печени, почек, селезенки и легких проводили по следующей методике. Пробы тканей и органов предварительно размельчали ножницами, отбирали навеску массой 25 г и гомогенизировали в 25 мл 85%-ного водного раствора ацетона. К гомогенату добавляли еще 50 мл раствора ацетона и экстрагировали в течение 10 минут при постоянном встряхивании. Затем, гомогенат выдерживали сутки при температуре +3^оС. Далее, экстракт отфильтровывали в круглодонную колбу, к навеске шерсти добавили 100 мл 85%-ного раствора ацетона и после 2-х часового перемешивания вторичный экстракт также фильтровали, объединяя с первичным. К объединенному ацетоновому экстракту добавили 20 мл бутилового эфира уксусной кислоты, а ацетоновую фракцию выпарили из экстракта на ротационном вакуумном испарителе при температуре до +40^оС. К остатку экстракта добавляли 30 мл смеси диэтилового эфира с гексаном (в соотношении 1:1) и экстрагировали в течение 5 минут при постоянном встряхивании. После разделения слоев верхнюю фракцию отбирали, а нижнюю фракцию подвергали вторичной экстракции, добавляя 30 мл смеси диэтилового эфира с гексаном. Гексанэфирные фракции объединяли, сушили безводным сульфатом натрия, после чего испаряли досуха под тягой. Сухой остаток экстрактов растворяли в 1 мл бутилового эфира уксусной кислоты.

Количественное определение остаточных количеств действующего вещества в пробах крови проводили также при помощи метода газожидкостной хроматографии. В основе данного метода также лежит принцип извлечения препарата из проб 85%-ным водным раствором ацетона из последующей переэкстракции в смеси гексана с диэтиловым эфиром и концентрированием экстракта.

Экстракцию препарата из проб крови проводили по следующей схеме. Пробу крови объемом 50 мл заливали в колбу с притертой пробкой объемом 300 мл и добавляли двукратно по 150 мл смеси ацетона: вода (4:1). После экстракции в течение 1 часа объединенный экстракт фильтровали, к фильтру приливали 20%-ную трихлоруксусную кислоту в объеме 50 мл. После охлаждения экстракта в течение 1 часа, к смеси добавляли 30 мл 5%-ного водного раствора  сульфата натрия. После центрифугирования в течение 15 минут при 4000 - 5000 об./мин. центрифугат экстрагировали гексаном (3х20 м). Объединенные гексановые экстракты промывали дистиллированной водой и, после сушки безводным сульфатом натрия, растворитель упаривали на ротационном вакуумной испарителе. Сухой остаток растворяли в 1 мл ацетона для последующего хроматографического анализа.

Количественное определение проводили общепринятым методом сравнения со стандартом по площади пика действующего вещества в пробе и известного количества стандарта. Содержание препарата в молоке, крови, органах и тканях анализируемом материале (С) в мг/кг или в мл/кг определяли по формуле:

                                                 Sp x Ccт х V x 100

                                         C = ---------------------------- , где

                                                   Sст х Vа х Р х К

Sр – площадь пика пробы, мм;

S ст – площадь пика стандарта;

C ст – содержание действующего вещества в стандарте, нг;

V – объем раствора для аликвоты, мл;

Va – объем аликвоты, мкл;

Р – навеска образца, г;

К – процент определения.

Результаты исследований: Данные по содержанию остатков препарата в крови, молоке, органах и тканях телят после обработки 0,005% эмульсией дельцида представлены в таблицах 1 и 2.

У каждого животного через 1, 3, 6, 10 и 24 часа после обработки отбирали пробы крови не менее 50 мл в пробирку с раствором антикоагулянта (3,8% раствора цитрата натрия в расчете 1 часть на 9 частей крови) и молоко объемом 50 мл. Результаты исследования проб на содержание пиретроида приведены в таблице 1.

Таблица 1

Концентрация действующего вещества в крови и молоке крупного рогатого скота после обработки 0,005% эмульсией дельцида

Принцип метода определения дельтаметрина в органах основан на извлечении остатков препарата из кожи, мышц, жира, печени, почек, селезенки, легких ацетоном или его 85%-ным раствором с последующей переэкстракцией в смесь гексана с диэтиловым эфиром и концентрировании экстракта. Очистку экстрактов в системе <гексан – ацетонитрил> применяли при значительном содержании жира или побочных коэкстрактивных веществ в пробах.

Таблица 2

Содержание дельтаметрина в органах и тканях телят после двукратной обработки 0,005% эмульсией дельцида

Как видно из данных таблицы, препарат, применяемый в виде 0,005% эмульсии дельцида на телятах, регистрируется в максимальном количестве на первые сутки. Начиная с пятых суток, идет резкий спад содержания, и на десятый день препарат обнаруживается в следовых количествах в коже и околопочечном жире.

Заключение: При однократной обработке крупного рогатого скота методом крупнокапельного опрыскивания 0,005% эмульсией дельцида в крови и молоке обнаруживали следы пиретроида только в течение первого часа после обработки. При двукратной обработке телят с интервалом 10 дней максимальное накопление действующего вещества в органах приходится на первые сутки. Начиная с пятых суток, идет резкий спад содержания и на десятый день пиретроид регистрировали лишь в тканях кожи и околопочечном жире. Учитывая данные фармакокинетики и сроков выведения препарата из тканей и органов убой на мясо крупного рогатого скота необходимо проводить не ранее, чем через пять дней после обработки.

ЛИТЕРАТУРА

1. Андреев К.П., Мяло И.И. Защита животных от гнуса. – Благовещенск: Амурской кн. изд-во. – 1961. – 32 с.

2. Андреев К.П. Система борьбы с паразитическими членистоногими в животноводстве // Пробл. вет. санитарии: Тр./ВНИИВС. Т. 20. – М., 1962. – С.73-81.

3. Андреев К.П. Ветеринарная энтомология и дезинсекция. – М.: Колос. – 1966. – 328 с.

4. Виолович Н.А. Слепни Сибири. – Новосибирск: Наука. – 1968. – 284 с.

5. Никольский С.Н., Водянов А.А. Псороптозы овец и крупного рогатого скота. – М.: Колос. – 1979. – 125 с.

6. Олсуфьев Н.Г. Слепни (семейство Tabanidae): Фауна СССР. Т. 7, в.2. – Л.: Наука, ленингр.отд-ние. – 1977. – 346 с.

7. Павлов С.Д. экономический эффект защиты животных от гнуса // Пробл. вет. санитарии:Тр./ВНИИВС. – Т. 20. – М.: 1962. – С. 172 - 178.

8. Павлов С.Д. Мероприятия против гнуса в животноводстве // Ветеринария. - № 6. – С. 15-17.

9. Павлов С.Д., Павлова Р.П. Препараты для защиты крупного рогатого скота от гнуса и зоофильных мух на пастбищах // Ветеринария. – 1999. – № 3. – С. 30-33

10. Ремез В.И. Саркоптоз свиней на Северном Кавказе (распространение, этиология, меры борьбы) // Ветеринария. – 1979. – № 4. – С. 41-42.

11. Стринадкин П.С. Лечение и профилактика псороптоза овец и крупного рогатого скота в условиях Сибири: автореф.дис.д-ра вет.наук. - М. - 1989. - 32 с.

12. Черкасский Е.С. Современные средства и методы борьбы с чесотками овец. - М.: Колос. - 1966. - 200 с.